小鼠骨肉瘤成骨細胞+LUC;K7M2 WT -GFP-PURO
商品屬性
種屬 | 小鼠 | 規格 | 1×10?cells/T25培養瓶 |
生長特性 | 貼壁生長 | 鑒定 | STR鑒定正確 |
細胞形態 | 成骨細胞樣 | 編號 | GOY-01X1929 |
商品介紹
細胞別稱;K7M2-WT-COGFP;小鼠骨肉瘤成骨細胞-綠色熒光蛋白標記;小鼠骨肉瘤成骨細胞-GFP
種屬來源;小鼠
組織來源;骨肉瘤
生長特性;貼壁生長
細胞形態;成骨細胞樣
參考資料(來源文獻)
Luciferase K7M2 wt細胞穩定表達綠色熒光蛋白標記。該細胞株性狀穩定,培養時不需要添加抗生素維持。可用作螢火蟲熒光素酶活性檢測中的陽性對照,也可用于活體動物成像實驗。該細胞通過慢病毒轉染的方式攜帶GFP基因。K7M2 wt [K7M2-WT]細胞抗原表達:Ⅷ因子、整合唾液酸蛋白(BSP)、二聚糖、飾膠蛋白聚糖、絨毛蛋白。此外,骨唾液酸蛋白、二聚糖、飾膠蛋白聚糖和骨調素的表達顯示K7M2 wt [K7M2-WT]細胞骨家族 |
細胞處理:
1) 凍存細胞的復蘇:
將含有1mL細胞懸液的凍存管在37℃水浴中迅速搖晃解凍,加入到含4-6mL培養基的離心管中混合均勻。在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,培養基重懸細胞。然后將細胞懸液加入含6-8ml培養基的培養瓶(或皿)中37℃培養過夜。第二天顯微鏡下觀察細胞生長情況和細胞密度。
2) 細胞傳代:如果細胞密度達80%-90%,即可進行傳代培養。
對于貼壁細胞傳代可以參考以下方法:
1. 棄去培養上清,用不含鈣、鎂離子的PBS潤洗細胞1-2次。
2. 加入0.25%(w / v)-0.53 mM EDTA于培養瓶中(T25瓶1-2mL,T75瓶2-3mL),置于37℃培養箱中消化1-2分鐘(難消化的細胞可以適當延長消化時間),然后在顯微鏡下觀察細胞消化情況,若細胞大部分變圓并脫落,迅速拿回操作臺,輕敲幾下培養瓶后加入3-4ml含10%FBS的培養基來終止消化。
3.輕輕打勻后吸出,在1000RPM條件下離心3-5min,棄去上清液,補加1-2mL培養液后吹勻。將細胞懸液按1:2的比例分到新T25瓶中,添加6-8ml按照說明書要求配置的新的培養基以保持細胞的生長活力,后續傳代根據實際情況按1:2~1:5的比例進行。
3)細胞凍存: 收到細胞后建議在培養前3代時凍存一批細胞種子以備后續實驗使用。
細胞傳代培養操作步驟:
(1)當顯微鏡下細胞形態和生長密度達到90%時,進行傳代。
(2)吸棄培養液。添加PBS清洗1~2次,搖勻后棄掉。
(3)加入覆蓋瓶底量的且含有EDTA。
(4)培養瓶放入37℃培養箱進行消化,3min左右拿出,用顯微鏡觀察細胞有無超過80%的量,發生收縮變圓、細胞間隙變大。輕輕拍打培養瓶使剩余細胞脫落,加入2倍量的中止消化,并吹打均勻,避免消化過度。
(5)細胞懸液吸至離心管內,1000rpm/min離心3~5min。
(6)吸棄上清,加入培養液重懸細胞,吹打細胞使其均勻分散。
(7)吸棄細胞懸液,選擇適合的密度接種到新培養瓶中,補充培養液并搖勻,放置37℃的CO2培養箱進行培養。
(8)根據細胞生長狀態確定換液或傳代時間。
(9)細胞凍存
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細胞接收后的處理:
1)收到細胞后,75%酒精消毒瓶壁將T25瓶置于37℃培養箱放置約2-3h,若發現培養瓶破損、有液溢出及細胞有污染,請拍照后及時聯系我們。
2)請在4或5X顯微鏡下確認細胞狀態,同時給剛收到的細胞拍照(10×,20×)各2-3張以及培養瓶外觀照片一張留存,作為售后時收到時細胞狀態的依據。
3)貼壁細胞:細胞在37℃培養箱中放置2-3h,顯微鏡下觀察細胞的生長和貼壁情況,有些貼壁細胞在快遞運送過程中會因振動脫落和脫落后成團的情況。若鏡下觀察細胞的生長密度若在60%以下,可去除培養瓶中灌液培養基(若有未貼壁的細胞需要離心回收,重懸打入到原培養瓶中),加入新配制的培養基6-8mL,放到細胞培養箱中繼續培養。若細胞生長密度達70%-80%以上,可以對細胞進行傳代處理。傳代過程中,若因運輸振動脫落的細胞需要離心回收。
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